Keap1/Nrf2/HIF-1α通路在宫颈癌中的表达及临床意义研究

[tӕ'u��k�����!zh�������jɚ�yr{kz�v)���rW����z��q�\jw�ǥ��Z�ؚ�\���^s+h�V��b���V�t���\�隊yr{kz�v)��2��ejɨ}ǫ�'�Ƨq���.z��y�i��,���~�^)���ko� ]`zw�j�pk,�����ǫ�'�Ƨq���.z�aj{ajا��v6�z{m��.z��M9 �ܖ�"�t�x���_ͭ���u��a�����i��,yاq��ƥq��z��vf�m觾�oyا��j�h��޲+��^��h�g����z��q�\jw��i)찢�l)���ko� ]ij�pk ����jW�ǫ"i���b���颲��E3�Fל�z%����vߍaʚ1���v�"nW�i�h�Q�R�j�JzW!�)z���Z+���)ڲ���^v���ԧ��SEm�M�zV�y��r�+���۞����"http://www.film1981.com/doc/duizhao/" target="_blank" class="keylink">对照方法开展研究，探讨Keap1/Nrf2/HIF-1α通路在宫颈癌患者中的表达，现报道如下。

1资料与方法

1.1一般资料

选择2017年3月～2018年10月江西省萍乡市湘雅萍矿合作医院治疗的40例宫颈癌患者作为研究对象，年龄35～76岁，平均（67.85±5.66）岁;病程1～5个月，平均（2.35±0.45）个月。病理类型：鳞癌34例，腺癌6例。纳入标准：①患者符合宫颈癌临床诊断[7]，均经手术病理最终确诊;②患者均行手术治疗，均能耐受手术;③患者能遵医完成相关检查、治疗者。排除标准：①合并精神异常或无法耐受手术治疗者;②术前行放化疗、免疫治疗或其他方法治疗者。选择同期手术患者癌旁5 cm正常组织作为对照。本研究均得到我院医院伦理委员会批准，患者及家属均签署知情同意书。

1.2仪器与试剂

抗人的HIF-1α（28b）单抗及牛抗鼠的二IgG抗。即用型超敏免疫组化染色试剂盒及显色试剂盒（Vector股份有限公司），兔抗人多克隆β-action（PR-0255）抗体和辣根过氧化物酶标记的羊抗兔二抗（德国罗氏诊断有限公司）;RT-PCR试剂盒和膜（北京中杉金桥生物技术有限公司）。

1.3方法

1.3.1 HIF-1α、Nrf2、Keap1阳性率的测定  采用免疫组织化学法测定获得宫颈癌组织及癌旁组织HIF-1α、Nrf2、Keap1表达。取手术过程中的病灶组织，向不同组织中加入蒸馏水与浓度为30.0%的H2O2，常温下加入内源性酶并进行10 min灭活，PBS连续进行3次洗涤。将最终获得的切片放置在0.01 M枸橼酸盐缓冲液中，加入生理盐水控制溶液使pH最终为6。电炉加热直到煮沸，间隔5 min后再次进行煮沸，常温下冷却，采用PBS完成2次洗滌，每次洗涤5 min，最后加入5% BSA封闭液并加入HIF-1α、Nrf2、Keap1蛋白（稀释浓度为1：100）一抗，一滴。滴加完毕后进行3次PBS洗涤;在1 ml底物中加入HIF-1α、Nrf2、Keap1蛋白二抗一滴，混合后常温下显色，苏木素复染后封片，倒置显微镜下观察细胞数量，每份标本测定3次，取平均值[8-9]。

1.3.2判断方法  参考奥尔雷德评分标准，分别从细胞的阳性数量（1～4分）、染色强度（0～12分）完成免疫组化染色评分，总分16分，分值越高，阳性率越高[10-11]。

1.3.3 Keap1/Nrf2/HIF-1α基因通路表达量  采用反转录-聚合酶链反应（Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction，RT-PCR）技术测定Keap1/Nrf2/HIF-1α基因通路表达量。①设计引物，完成标本组织RNA的提取，并对获得的标本完成逆转录反应、电泳。②Keap1/Nrf2/HIF-1α基因测定。采用PCR完成目的基因的扩增，以β-actin基因作为对照，设定总反应体50 μl（10×Reaction Buffer 5 μl）、dNTP（2.5 μmol/leach）的混合物2 μl、预测引物1（12.5 pmol/μl）、预测引物2（12.5 pmol/μl）、Actin引物1、Actin引物2各1 μl、逆转录反应液3 μl、Taq DNA Polymerase（5 U/μl）1 μl、ddH2O扩容至50 μl）。③扩增条件的设定。设定反应条件：30℃，10 min;42℃，30 min;99℃，5 min;5℃，5 min，连续进行35个循环，最后72℃下完成10 min延伸，10℃保存。扩增产物取5 μl在1.2%琼脂糖（含EB 0.5 ng/ml）上电泳，紫外灯下观察结果观察结果并照相，吸光度扫描仪扫描后PCR条带用软件进行定量分析，每一个基因的表达量用β-actin内参进行标准化，结果为基因表达量HIF-lα对β-actin内参的比值，以上结果重复3次，取平均值[12]。

1.4统计学方法

采用SPSS 18.0统计学软件进行数据分析，计量资料用均数±标准差（x±s）表示，两组间比较采用t检验;计数资料采用率表示，组间比较采用χ2检验，以P<0.05为差异有统计学意义。

2结果

2.1不同组织中HIF-1α、Nrf2、Keap1阳性率的比较及宫颈癌组织免疫组化结果

宫颈癌组织中的HIF-1α、Nrf2、Keap1阳性率，均高于癌旁组织的阳性率（P<0.05）（表1）。

2.2不同组织中的Keap1/Nrf2/HIF-1α基因通路表达量情况

宫颈癌组织中的Keap1/Nrf2/HIF-1α基因通路表达量高于癌旁组织中的表达量（P<0.05）（图2）。

3讨论

临床文献报道，宫颈癌的发生与内源性氧化应激反应或细胞氧化过程中核黄素的转运有关。从大的角度来说，氧化应激是指机体在受到体内外各种不良因素刺激时，打破体内氧化和抗氧化的平衡，引起体内细胞凋亡或异常增生，从而诱导某种疾病的发生、发展[13]。

目前，抗氧化应激信号通路中Keap1/Nrf2/HIF-1α通路最为常见。对于正常人而言，Keap1、Nrf2、HIF-1α均位于细胞质中，且表达水平相对较低或不表达，二者相结合处于稳态。Nrf2蛋白在泛素蛋白酶体途径介导下降会不断降解，造成Nrf2表达量较低[14]。但是，当细胞发生致病因素，如：致瘤因素刺激时，HIF-1α、Keap1部分结构将会被修改，并且与Nrf2结构部位构象发生改变，持续引起Nrf2解离，造成信号通路失活[15]。本研究结果提示，宫颈癌组织中的HIF-1α、Nrf2、Keap1阳性率，均高于癌旁组织的阳性率（P<0.05）。免疫组化下Nrf2主要表达于宫颈癌细胞核内，部分位于胞质内，而HIF-1α、Keap1在宫颈癌组织中多表达于细胞胞质内，由此看出HIF-1α、Nrf2、Keap1在宫颈癌组织中阳性率较高，能参与疾病的发生、发展。HIF-1α在低氧状态下表达水平较高，其基因结构活跃，能迅速对低氧做出反应，HIF-1α迅速积累，使细胞和机体能够耐受低氧环境，这种对氧浓度变化的迅速的协同的反应，对于机体具有显著的保护意义[16-17]。本研究结果提示，宫颈癌组织中的Keap1/Nrf2/HIF-1α基因通路表达量，高于癌旁组织的表达量（P<0.05）。临床研究表明，细胞在缺氧条件下产生的HIF-1α能与靶基因结合，促进靶基因的转录，机理可能为：①能促进红细胞生成素的编码基因[18];②能影响血管内皮生长因子的表达;③能影响血红素加氧酶、诱导型一氧化氮合酶的编码[19];④能促进葡萄糖载体蛋白、糖酵解酶表达水平。因此，临床上可以加强Keap1/Nrf2/HIF-1α通路水平测定评估患者预后，指导临床治疗[20]。但是，本研究中亦存在诸多不足，一方面，纳入病例数较少，尚需要大样本容量验证;另一方面，进行数据统计处理时存在较大的人为误差，均需要进一步研究与探讨。

综上所述，Keap1/Nrf2/HIF-1α通路在宫颈癌中呈表达，可能参与了宫颈癌疾病发生和发展的过程。

[参考文献]

[1]胡流芳，王迎，任汝静，等.Keap1-Nrf2/ARE信号通路的抗氧化应激作用及其调控机制[J].国际药学研究杂志，2016， 43（1）：146-152.

[2]卢志刚，黄家彬，刘芸，等.醒脑静注射液對急性脑梗死Keap1-Nrf2/ARE氧化应激通路的影响[J].广东医学，2016， 37（20）：3127-3129.

[3]Abu-Alainin W，Gana T，Liloglou T，et al.UHRF1 regulation of the Keap1-Nrf2 pathway in pancreatic cancer contributes to oncogenesis[J].J Pathol，2016，238（3）：423-433.

[4]马瑶，白雪，李煜，等.混合砷对Keap1抑制细胞Keap1/Nrf2-ARE和MAPK/ERK信号通路的影响[J].环境与职业医学，2017，34（11）：999-1003.

[5]黄攀，陆瀚文，周峥嵘，等.Keap1、Nrf2和HO-1在大鼠应激性胃溃疡中的表达[J].江苏农业科学，2016，44（12）：280-282.

[6]刘理静，钱红，尹辉明，等.中华猕猴桃果仁非饱和脂肪酸通过激活Keap1/Nrf2信号通路增强肺纤维化大鼠抗氧化能力[J].细胞与分子免疫学杂志，2016，32（4）：479-483.

[7]韩伦，赵琳.Nrf2-Keap1信号通路对肿瘤生物学行为影响的研究进展[J].山东医药，2016，56（36）：103-105.

[8]王换换，申正杰，肖航，等.热应激对肝脏中Keap1-Nrf2信号通路及下游基因表达的影响[J].南京农业大学学报，2017，40（1）：151-156.

[9]Sun X，Ou Z，Chen R，et al.Activation of the p62-Keap1-NRF2 pathway protects against ferroptosis in hepatocellular carcinoma cells[J].Hepatology，2016，63（1）：173-184.

[10]吉琳梅，沈宏春，樊均明.NRF2通路在慢性肾脏疾病发生发展中的作用研究进展[J].山东医药，2016，56（19）：100-102.

[11]黄娟，廖君，彭熙炜，等.脑泰方对脑缺血/再灌注大鼠海马区Nrf2、HO-1和膜铁转运辅助蛋白表达的影响[J].中国药理学通报，2017，33（10）：1467-1472.

[12]王朝阳，荆黎.核转录因子E2相关因子2和Keap1的分子结构和功能及其信号通路调控分子机制研究进展[J].中国药理学与毒理学杂志，2016，30（5）：598-604.

[13]Best SA，Souza DPD，Kersbergen A，et al.Synergy between the KEAP1/NRF2 and PI3K pathways drives non-small-cell lung cancer with an altered immune microenvironment[J].Cell Metab，2018，27（4）：935.

[14]白美玲，郝秀轻，李峰，等.食管鳞状上皮细胞癌中Keap1、Nrf2和HO-1的表达及临床病理意义[J].临床与实验病理学杂志，2016，32（8）：914-917.

[15]姬卫秀，何诗依，严露，等.低氧、低氧训练对小鼠骨骼肌Nrf2/Keap1结合量和p-Nrf2表达的影响[J].中国体育科技，2017，53（4）：114-118.

[16]叶海主，陈亚娟，赵文英，等.肿瘤细胞和耐药肿瘤细胞中FoxO3/Keap1/Nrf2通路的表达差异[J].中国临床药理学与治疗学，2017，22（8）：859-865.

[17]王宇锋，刘旭，陈超，等.6-姜烯酚对结直肠癌细胞中Keap1/Nrf2通路及下游基因表达的影响[J].宁夏医科大学学报，2017，39（10）：1127-1132.

[18]马瑶，白雪，李煜，等.混合砷对Keap1抑制细胞Keap1/Nrf2-ARE和MAPK/ERK信号通路的影响[J].环境与职业医学，2017，34（11）：999-1003.

[19]胡流芳，王迎，任汝静，等.Keap1-Nrf2/ARE信号通路的抗氧化应激作用及其调控机制[J].国际药学研究杂志，2016，43（1）：146-152.

[20]王换换，申正杰，肖航，等.热应激对肝脏中Keap1-Nrf2信号通路及下游基因表达的影响[J].南京农业大学学报，2017，40（1）：151-156.

（收稿日期：2018-10-22  本文编辑：孟庆卿）

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